一、實驗原理
DNA甲基化存在于大多數真核生物中，一般發生在CpG雙核苷酸中胞嘧啶的5’UTR區，起調控作用。CpG的胞嘧啶大概有80%被甲基化，20%處于基因調控區的CpG島中。
DNA甲基化是最早發現的基因表觀修飾方式之一，真核生物中的甲基化僅發生于胞嘧啶，即在DNA甲基化轉移酶(DNMTs)的作用下使CpG二核苷酸5'-端的胞嘧啶轉變為5'-甲基胞嘧啶。DNA甲基化通常抑制基因表達，去甲基化則誘導了基因的重新活化和表達。這種DNA修飾方式在不改變基因序列前提下實現對基因表達的調控。脊椎動物DNA的甲基化狀態與生長發育調控密切相關，比如在腫瘤發生時，抑癌基因CpG島以外的CpG序列非甲基化程度增加，CpG島中的CpG則呈高度甲基化狀態，導致抑癌基因表達的下降。
BSP甲基化測序（Bisulfite Genomic Sequencing PCR）的原理通過對基因組DNA進行重亞硫酸鹽處理，非甲基化的胞嘧啶被脫氨基而轉變成尿嘧啶，在隨后的PCR反應中尿嘧啶轉變成胸腺嘧啶，而甲基化的胞嘧啶不能被脫氨基，在反應完成時被保留，我們將擴增得到的PCR產物進行TA克隆測序，可以分析甲基化發生的具體情況。該方法實驗結果準確性高，是甲基化檢測的金標準。
二、 應用簡介
在惡性腫瘤的發展中，甲基化的狀態并不是一成不變，腫瘤細胞內全基因組的低甲基化程度與疾病進展、腫瘤大小和惡性程度都有密切的關系，DNA甲基化檢測對腫瘤惡性程度的判斷有重要意義。
三、 實驗方法
四、 樣本送檢要求
五、案例展示
六、常見問題
1、蛋白酶K可以使用滅菌雙蒸水配制成20mg/ml；
2、RNA酶必須要配制成不含DNA酶的RNA酶，即在購買市售RNA酶后進行再處理，配制成10mg/ml。
3、驗證提取DNA的純度的方法有二：紫外分光光度計計算OD比值；2：1%-1.5%的瓊脂糖凝膠電泳。第二種方法可以完全明確所提基因組DNA的純度，并根據Marker的上樣量估計其濃度，以用于下一步的修飾。
4、基因組DNA的量不需十分精確，寧多勿少，因為在以后純化回收步驟中會有丟失，且此方法修飾最多可至4ug。
5、所有試劑均須新鮮配制，所以配液的技術要過關，既要快，又要精確。
6、亞硫酸氫鈉溶液呈強酸性，一定用堿將PH調制5.0，否則PH不合適會影響后續純化吸收。
7、水浴最好達16小時，雖可以短至8小時，但后者修飾會有不完全。?
8、在使用注射器時，一定要用力均勻且輕，如使用暴力，會將小柱內的薄膜擠破，失去作用。?
9、乙酸銨、糖原不需新鮮配制，糖原配好后放在-20度保存，乙酸銨室溫即可，因為這樣濃度的乙酸銨非常難溶，一旦放在4度，取出用時也會有很多溶質析出。
10、異丙醇、70%乙醇都不需要新鮮配制，但如果用量大，現場配也很方便。?此步關鍵是在樹脂與DNA的結合上，這就再次強調第二部分調亞硫酸鈉PH值得重要性。因為樹脂與DNA結合需要有一個適當的PH，如前一步沒做好，此步樹脂不能與DNA很好結合，將會帶來災難性后果，即DNA隨著液體被擠出了，洗脫時實際已沒有任何DNA了。??
11、PCR產物進行瓊脂糖凝膠電泳，要使用新配的電泳液。凝膠濃度1%-2%均可。
12、凝膠DNA回收時在300nm紫外燈下觀察條帶位置，切取目的片斷所在位置的凝膠，盡量小，保證特異性。
13、紫外照射時間不能過長，否則對DNA有損傷。?
14、回收后的DNA如不馬上用就儲存于-20度，在數月內是很穩定的。???
15、涂板要均勻，保證Xgar和IPTG均勻分布在板面上；?
16、不要讓藍白斑長得太滿，否則選取克隆時容易一下挑2個。?
七、服務流程
病理學檢測
分子生物學檢測
免疫學檢測服務
細胞實驗服務
動物實驗平臺
